SlideShare una empresa de Scribd logo
1 de 58
CORIZA INFECCIOSA

SINÓNIMOS: Rinitis , Catarro
contagioso, Catarro nasal agudo, Crup
, Moquillo, Refriado, Peste.
CONCEPTO
 Es una enfermedad respiratoria aguda que se
  caracteriza por secreción nasal, estornudos y
  tumefacción de la cara, por debajo de los
  ojos.
 Afecta fundamentalmente a pollos (pollitas y
  ponedoras) y, ocasionalmente a pollos de
  engorde.
 También aparece en faisanes, gallinas de
  Guinea. palomas y codornices japonesas.
 Se distribuye por todo el mundo y es bastante
  importante en los climas tropicales y
  templados.
Pollitas y ponedoras
Faisanes, gallinas de guinea
Palomas
codornices
RESEÑA HISTORICA

 En 1932 de Blieck propuso el nombre Bacillus
 haemoglobinphilus coryza gallinarum para el
 agente causal del “catarro contagioso” de los
 pollos. Con base estudios bacteriológicos y en
 los criterios del sistema de nomenclatura
 binomial, de manera independiente.
RESEÑA HISTORICA
 En 1934, Eliot y Lewis y Delaplane propusieron el
 nombre Haemophilus gallinarum para el agente
 causal de la coriza infecciosa. Varios estudios
 mostraron el requerimiento de los factores de
 crecimiento X (hemina) y V (NAD, dinucleótico de
 adenina nicotinamida) para el cultivo in vitro de H
 gallinarum. Sin embargo, McGaughey y Page
 señalaron la independencia del factor X de
 crecimiento en un número de aislamientos
 estudiados.
RESEÑA HISTORICA
 Basados en estos estudios, Biberstein y White
 propusieron la especie H. paragallinarum para los
 microorganismos causantes de coriza
 infecciosa, dependiente del factor V pero
 independiente del factor X de crecimiento. A partir de
 entonces, con excepción de un informe los nuevos
 aislamientos en brotes de coriza infecciosa se
 clasifican como H. paragallinarum.
 Hoy se acepta que H. gallinarum nunca existió y
 que la confusión se debió a la descripción
 errónea de los aislamientos estudiados a causa
 de limitaciones en las técnicas de laboratorio
 empleadas
ETIOLOGIA
 La bacteria causante, Haemophhilus
  paragallinarum, es un bacilo Gram
  negativo, pleomorfo, inmóvil, catalasa negativo y
  microaerófilo, que requierede NAD (factor V) para
  el crecimiento.
 La bacteria tiene tres serovariedades: A, B y C.
 La gran mayoría de los brotes son causados por
  las serovariedades A y/o C.
 Cuando se cultiva en agar sangre con una
  colonia de estafilococos que excreta el factor
  V, las colonias satélites adquieren el aspecto de
  gotas de rocio.
Cocobacilos
Se
agrupan a
menudo
en
cadenas
cortas y
bacilos
aislados o
bien
filamentos
os.
PATOGENECIDAD
 Los antígenos hemoaglutinantes, o
  hemoaglutininas, son las estructuras
  principalmente relacionadas con la
  antigenicidad, patogenicidad e inmunogenicidad
  de H. paragallinarum.
 Se considera que la adherencia bacteriana a las
  células epiteliales es el primer paso en el proceso
  de infección de las superficies mucosas.
 Las adhesinas son las estructuras bacterianas
  que median la adherencia a los receptores de las
  células del huésped. Esta adherencia se ha
  demostrado in vivo e in vitro de H. paragallinarum
  a células epiteliales traqueales de pollo.
PATOGENECIDAD
 Se ha demostrado que la hemocina producida
  por la bacteria puede ser importante en la
  colonización de los senos respiratorios de los
  pollos.
 Se considera que H. paragallinarum es un agente
  patógeno primario en aves susceptibles.
EPIDEMIOLOGÍA Y
TRANSMISIÓN
 El reservorio de la infección son las aves con una
    infección crónica o las portadoras sanas. Son
    sensibles los pollos de todas las edades, pero la
    sensibilidad aumenta con la edad.
   P. I. de 1 a 3 días.
   La enfermedad dura normalmente 2 semanas.
   En campo, enfermedades concomitantes (p.e.
    micoplasmosis) la prolongan por varias semanas.
   Aves infectadas: amenaza constante para las
    que no están.
   Granjas con aves de diferentes edades, tienden a
    perpetuar la enfermedad.
 La enfermedad se transmite
  HORIZONTALMENTE: Contacto directo
  (secreciones nasales y oculares), aerosoles
  (gotitas transportadas por el aire), agua
  contaminada, por comederos y bebederos
  sucios , manipulación incorrecta de animales
  infectados, partículas de polvo o aire
  contaminadas .
 El hecho de que las aves que padecen la
  enfermedad queden como “portadoras
  sanas” en la instalación avícola, constituyen
  un riesgo inminente de contagio para los
  nuevos lotes de reeplazo.
HALLAZGOS CLÍNICOS
 En la forma más leve de la enfermedad
  (observada en pollas jóvenes de raza Leghorn o
  de carne), el único síntoma puede ser
  depresión, una secreción nasal serosa y, a
  veces, una tumefacción facial leve.
 En la forma más grave (generalmente en
  ponedoras jóvenes y adultas de raza Leghorm o
  reproductoras pesadas) se produce una
  tumefacción grave de uno o ambos senos
  infraorbitarios, con edema de los tejidos vecinos
  que puede llegar a provocar el cierre de uno o
  ambos ojos.
 En las aves adultas (especialmente los
  machos), el edema puede extenderse al espacio
Forma más leve:
 Puede haber estertores, descarga nasal,
 lagrimeo (espuma en la conjuntiva ocular),
 secreción nasal serosa, tos; estornudos;
 dificultad respiratoria; los pollos sacuden la
 cabeza, plumas del ala manchadas,depresión,
 diarrea; todo de intensidad variable, según la
 extensión de la infección.

 En las fases agudas de la enfermedad disminuye
 el consumo de agua y alimentos (anorexia).

 La tumefacción desaparece en 10-14 días. Si se
 desarrolla una infección secundaria, la
 tumefacción puede durar meses.
En machos reproductores
Coriza en un gallo de pelea y en una
paloma.
Grados de coriza
 El ave de abajo es    Grado 2
 sana, la de arriba
 presenta una leve
 enfermedad.
Grado 2
Grado 3
Grado 4
 El edema y la
 hinchazón son más
 notables, dificultad
 para abrir los ojos.
Coriza infecciosa complicada.
 La producción de huevos puede retrasarse en
  gallinas jóvenes y reducirse gravemente entre un
  10 y 40% la producción de huevos en gallinas
  adultas (generalmente en el pico de postura).
 La enfermedad causa alta morbilidad y baja o
  nula mortalidad.
 Los pollos de engorde presentan retraso en el
  crecimiento, perdida de peso y aumento en el
  número de aves que deben ser eliminadas;
  ocasionando altas pérdidas.
LESIONES
 CASOS AGUDOS. Las lesiones se presentan
  principalmente en los senos infraorbitarios:
  Exudado copioso, persistente, grisáceo y
  semilíquido. Cornetes y senos nasales
  congestionados con el exudado purulento. Más
  tarde y con la participación de otros gérmenes
  patógenos(E. coli. Mycoplasma gallisepticum y/o
  Mycoplasma sinoviae) el exudado puede
  consolidarse y adquirir un color amarillento (se
  cronifica la enfermedad).
 También se puede encontrar otras lesiones
  como: conjuntivitis, traqueítis, bronquitis y
  aerosaculitis (inflamación de los sacos aéreos)..
LESIONES
 A nivel histológico, la respuesta de los órganos
 respiratorios consiste en la desintegración e
 hiperplasia de la mucosa y el epitelio glandular
 junto con edema con infiltración de
 heterófilos, macrófagos y mastocitos.
DIAGNÓSTICO
 Es diagnostico el aislamiento de un
  microorganismo catalasa negativo, cultivado en
  colonias a partir de pollos que provienen de
  granjas con historial de coriza de rápida difusión.
 Inoculación en pollos sensibles del exudado
  nasal de pollos infectados: produce síntomas
  típicos.
 Detección de anticuerpos: pruebas de
  Aglutinación, Precipitación en gel de agar, y H.I.
  (inhibición de la hemaglutinación), alrededor de
  2-3 semanas después de la infección.
 DIAGNOSTICO POR LABORATORIO.
Aislamiento.
 Aislamiento de H. paragallinarum a partir de los
 senos infraorbitarios.

 Una vez sacrificada el ave se procede a cortar la
 región infraorbitaria con ayuda de pinzas
 estériles. Se debe tener en cuenta la esterilidad
 del medio para evitar la contaminación con otras
 bacterias, para ello se cauteriza la zona orbitaria
 antes de realizar el corte.
Siembra
 El hisopado de los senos infraorbitarios del ave
  es sembrado por agotamiento en una placa de
  agar sangre en completa esterilidad. Luego se
  procede a sembrar en línea vertical una cepa de
  Staphylococcus spp. (crecimiento en satélite), las
  colonias de H. paragallinarum crecerán alrededor
  del crecimiento de Staphylococcus spp.
 También se puede tomar hisopos traqueales
  (mejor de la hendidura palatina).
Siembra.
Cámara de microaerofília
DIAGNÓSTICO
 DIAGNÓSTICO CLÍNICO: Es un poco difícil.


 DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL: Cólera aviar,
 micoplasmosis, laringotraqueítis, enfermedad de
 New Castle, bonquitis infecciosa, gripe aviar,
 síndrome de cabeza hinchada (S.C.H.) y
 deficiencia de vitamina A.
CONTROL Y TRATAMIENTO
 La prevención es la única forma de controlar la
  coriza in-fecciosa. Mantener separadas las aves
  de diferentes edades y sin aglomeración. Separar
  las aves afectadas o portadoras de la población
  sana. Comprar solamente pollos y gallinas de
  fuentes libres de la infección.
 Si ocurriera infección, el único procedimiento que
  queda para eliminar la enfermedad es la
  despoblación completa de las
  instalaciones, seguida de una limpieza
  /desinfección a fondo. (COSTO ?)
CONTROL Y TRATAMIENTO
 Si las pollitas de reposición tienen que colocarse
  en una granja con antecedentes de coriza
  infecciosa, existen bacterinas disponibles que
  ayudan a prevenir y controlar la enfermedad.
 VACUNACIÓN: Las bacterinas deben contener
  los tres serotipos A, B y C. Porque no hay
  protección cruzada. También se le incorporan
  serovariantes existentes en la población objetivo.
 El plan de vacunación comprende dos o tres
  aplicaciones de la bacterina:
 La primera a las 8 semanas de edad.
 La segunda a las 12 semanas. Y se hay una
  tercera aplicación se realiza a las 17
  semanas, antes de inicio de producción.
 La aplicación se hace por vía subcutánea en el
  cuello, detrás de la cabeza; generalmente a dosis
  de 0,5 ml por ave.
 Se aconseja no aplicar otra clase de vacuna al
  mismo tiempo
 .
CONTROL Y TRATAMIENTO
 Tratamiento con antibióticos. La enfermedad no
  puede ser eliminada completamente. No existe
  un tratamiento específico, aunque el uso de
  sulfato de
  quinolonas, tetraciclinas, fosfomicina,sulfadimeto
  xina, sulfonamida-trimetoprim, eritromicina en el
  alimento o el agua, tetraciclina por vía
  subcutánea, pueden reducir los síntomas de la
  enfermedad, pero no pueden eliminarla
  completamente.
 El tratamiento debe iniciarse en forma rápida en
  el agua de bebida, después se puede reforzar en
  el alimento.
CONTROL Y TRATAMIENTO
 En los brotes más graves, aunque el tratamiento
 puede producir una mejoría, la enfermedad
 puede reaparecer cuando se suspende la
 medicación.
Algunos antibióticos y su
dosificación.
 FOSFOMICINA: Dosificación: en aves 40 mg/Kg.
    de peso vivo, por 3 -7 días en al agua de bebida
    o a criterio del M.V.
   Producto comercial: FOSBAC-25% .
    Composición: Cada 100 g contienen 25 g de
    fosfomicina. Presentación: sobres de 500 g.
   DOXICICLINA: Dosificación en aves : 15 - 20
    mg/Kg de peso del ingrediente activo cada 24
    horas por 3 a 5 días , a criterio del Médico
    Veterinario, en el agua de bebida.
   Producto comercial: DOXIPHAR-25%.
    Composición
   Cada 100 g de DOXIPHAR contiene: Doxiciclina
    Hiclato 25 grs..Presentación: sobres de 1 kg.
 CIPROFLOXACINA: . Dosificación: AVES: La
  dosis mínima de Ciprofloxacina es de 10 mg/Kg
  de peso al día. El tratamiento debe repetirse por
  3 a 5 días o a criterio del Médico Veterinario,
  administrada en el agua de bebida.
 Producto comercial: CIPROPHAR- 10%.
  Composición: Cada 100 grs de CIPROPHAR
  contiene 10 g. de CIPROFLOXACINA
  Clorhidrato. . Presentación: Sobres por 20 grs.,
  100 grs. y 1 kilo.
 AMOXICILINA (Betalactámico).Dosificación:
  AVES: Los estudios de farmacocinética
  demuestran que la dosis óptima es de 15–20 mg
  de Amoxicilina Trihidrato por Kg de peso. Durante
  3-5 días o a criterio del M.V., en el agua de
  bebida.
 Producto comercial: AMOXIPHAR- 50%.
  Composición: Cada 100 gramos contienen
  Amoxicilina Trihidrato 50 grs.
 Presentación: Sobres de 100 grs.
 ENROFLOXACINA. Dosificación: Aves: 10 mg
  por kilo de peso (es mejor utilizarla a dosis de 15-
  20 mg por kilo de peso).durante 5 días o a criterio
  del M.V. en el agua de bebida.
 Producto comercial: BAYTRIL-10%.
  Composición: Cada 100 c.c. contienen 10 g. de
  Enrofloxacina.
 Presentación: Frasco por 1 litro.
 OXITETRACICLINA inyectaable. Dosificación: En
  aves es de 50 mg. Por kilo de peso, vía
  subcutánea en la región posterior de la cabeza.
  Generalmente una sola aplicación.
 Producto comercial: TERRAMICINA L.A.
  Composición: cada 100 c.c. contienen 20 g. de
  oxitetraciclina. Presentación: frasco por 250 c.c.
También se puede utilizar droga en
el alimento.
 Por ejemplo, la CLORTETRACICLINA CHL. La
 dosis para aves es de 70 mg/ave/día.
 Generalmente el producto viene al 80%. Un kilo
 del producto contiene 800 grs. De Clortetraciclina
 Chl.

Más contenido relacionado

La actualidad más candente (20)

Manual de clinica de aves
Manual de clinica de avesManual de clinica de aves
Manual de clinica de aves
 
CORIZA INFECCIOSA AVIAR.pptx
CORIZA INFECCIOSA AVIAR.pptxCORIZA INFECCIOSA AVIAR.pptx
CORIZA INFECCIOSA AVIAR.pptx
 
Neumonía enzoótica porcina
Neumonía enzoótica porcinaNeumonía enzoótica porcina
Neumonía enzoótica porcina
 
Coriza infecciosa
Coriza infecciosaCoriza infecciosa
Coriza infecciosa
 
Influenza aviar (orthomyxoviridae)
Influenza aviar (orthomyxoviridae)Influenza aviar (orthomyxoviridae)
Influenza aviar (orthomyxoviridae)
 
Parasitologia Animal II
Parasitologia Animal IIParasitologia Animal II
Parasitologia Animal II
 
Brucelosis Bovina
Brucelosis Bovina Brucelosis Bovina
Brucelosis Bovina
 
Sarna en los Animales domésticos
Sarna en los Animales domésticosSarna en los Animales domésticos
Sarna en los Animales domésticos
 
viruela aviar
viruela aviarviruela aviar
viruela aviar
 
Rinotraqueitis infecciosa bovina
Rinotraqueitis infecciosa bovinaRinotraqueitis infecciosa bovina
Rinotraqueitis infecciosa bovina
 
Coriza aviar
Coriza aviarCoriza aviar
Coriza aviar
 
BRONQUITIS INFECCIOSA AVIAR
BRONQUITIS INFECCIOSA AVIAR BRONQUITIS INFECCIOSA AVIAR
BRONQUITIS INFECCIOSA AVIAR
 
Colera aviar exposicion
Colera aviar exposicionColera aviar exposicion
Colera aviar exposicion
 
Onfalitis onfaloflebitis- onfaloarteritis
Onfalitis  onfaloflebitis- onfaloarteritisOnfalitis  onfaloflebitis- onfaloarteritis
Onfalitis onfaloflebitis- onfaloarteritis
 
Oestrus ovis
Oestrus ovisOestrus ovis
Oestrus ovis
 
Distemper canino
Distemper caninoDistemper canino
Distemper canino
 
Enfermedad de marek
Enfermedad de marekEnfermedad de marek
Enfermedad de marek
 
Enfermedad de gumboro
Enfermedad de gumboroEnfermedad de gumboro
Enfermedad de gumboro
 
Colibacilosis aviar
Colibacilosis aviarColibacilosis aviar
Colibacilosis aviar
 
Leptospirosis porcina
Leptospirosis porcinaLeptospirosis porcina
Leptospirosis porcina
 

Similar a Coriza infecciosa (20)

Micoplasma
MicoplasmaMicoplasma
Micoplasma
 
Colera aviar
Colera aviar Colera aviar
Colera aviar
 
Cólera
CóleraCólera
Cólera
 
Micoplasmosis 110511174434-phpapp02
Micoplasmosis 110511174434-phpapp02Micoplasmosis 110511174434-phpapp02
Micoplasmosis 110511174434-phpapp02
 
COLERA AVIAR
COLERA AVIAR COLERA AVIAR
COLERA AVIAR
 
Coryza infecciosa.
Coryza infecciosa.Coryza infecciosa.
Coryza infecciosa.
 
Micoplasmosis
MicoplasmosisMicoplasmosis
Micoplasmosis
 
106. pw h-inf_bordet_2016_uc
106.  pw h-inf_bordet_2016_uc106.  pw h-inf_bordet_2016_uc
106. pw h-inf_bordet_2016_uc
 
Aspergilosis en aves.pptx
Aspergilosis en aves.pptxAspergilosis en aves.pptx
Aspergilosis en aves.pptx
 
CORIZA AVIAR E.pptx
CORIZA AVIAR E.pptxCORIZA AVIAR E.pptx
CORIZA AVIAR E.pptx
 
Laringotraqueitis
LaringotraqueitisLaringotraqueitis
Laringotraqueitis
 
CORIZA INFECCIOSA AVIAR DOCUMENTO RELACIONADO A LAS ENFERMEDADES DE AVES
CORIZA INFECCIOSA AVIAR DOCUMENTO RELACIONADO A LAS ENFERMEDADES DE AVESCORIZA INFECCIOSA AVIAR DOCUMENTO RELACIONADO A LAS ENFERMEDADES DE AVES
CORIZA INFECCIOSA AVIAR DOCUMENTO RELACIONADO A LAS ENFERMEDADES DE AVES
 
Influenza aviar
Influenza aviarInfluenza aviar
Influenza aviar
 
Bronquitis infecciosa aviar
Bronquitis infecciosa aviarBronquitis infecciosa aviar
Bronquitis infecciosa aviar
 
INFLUENZA AVIAR
INFLUENZA AVIARINFLUENZA AVIAR
INFLUENZA AVIAR
 
Influenza aviar
Influenza aviarInfluenza aviar
Influenza aviar
 
Micoplasmosis
MicoplasmosisMicoplasmosis
Micoplasmosis
 
Micoplasmosis
MicoplasmosisMicoplasmosis
Micoplasmosis
 
NEWCASTLE
NEWCASTLENEWCASTLE
NEWCASTLE
 
newcastle aves
newcastle avesnewcastle aves
newcastle aves
 

Más de 09m1958

Bioseguridad avicolas 1183_de_2010
Bioseguridad avicolas 1183_de_2010Bioseguridad avicolas 1183_de_2010
Bioseguridad avicolas 1183_de_201009m1958
 
Conferencias cargue pollo
Conferencias cargue polloConferencias cargue pollo
Conferencias cargue pollo09m1958
 
Patología del sistema respiratorio
Patología del sistema respiratorioPatología del sistema respiratorio
Patología del sistema respiratorio09m1958
 
Conferencias cargue pollo
Conferencias cargue polloConferencias cargue pollo
Conferencias cargue pollo09m1958
 
Tecnica necropsia y toma de muestras
Tecnica necropsia y toma de muestrasTecnica necropsia y toma de muestras
Tecnica necropsia y toma de muestras09m1958
 
Tecnica necropsia y toma de muestras
Tecnica necropsia y toma de muestrasTecnica necropsia y toma de muestras
Tecnica necropsia y toma de muestras09m1958
 
Avicultura
AviculturaAvicultura
Avicultura09m1958
 

Más de 09m1958 (7)

Bioseguridad avicolas 1183_de_2010
Bioseguridad avicolas 1183_de_2010Bioseguridad avicolas 1183_de_2010
Bioseguridad avicolas 1183_de_2010
 
Conferencias cargue pollo
Conferencias cargue polloConferencias cargue pollo
Conferencias cargue pollo
 
Patología del sistema respiratorio
Patología del sistema respiratorioPatología del sistema respiratorio
Patología del sistema respiratorio
 
Conferencias cargue pollo
Conferencias cargue polloConferencias cargue pollo
Conferencias cargue pollo
 
Tecnica necropsia y toma de muestras
Tecnica necropsia y toma de muestrasTecnica necropsia y toma de muestras
Tecnica necropsia y toma de muestras
 
Tecnica necropsia y toma de muestras
Tecnica necropsia y toma de muestrasTecnica necropsia y toma de muestras
Tecnica necropsia y toma de muestras
 
Avicultura
AviculturaAvicultura
Avicultura
 

Coriza infecciosa

  • 1. CORIZA INFECCIOSA SINÓNIMOS: Rinitis , Catarro contagioso, Catarro nasal agudo, Crup , Moquillo, Refriado, Peste.
  • 2. CONCEPTO  Es una enfermedad respiratoria aguda que se caracteriza por secreción nasal, estornudos y tumefacción de la cara, por debajo de los ojos.  Afecta fundamentalmente a pollos (pollitas y ponedoras) y, ocasionalmente a pollos de engorde.  También aparece en faisanes, gallinas de Guinea. palomas y codornices japonesas.  Se distribuye por todo el mundo y es bastante importante en los climas tropicales y templados.
  • 7. RESEÑA HISTORICA  En 1932 de Blieck propuso el nombre Bacillus haemoglobinphilus coryza gallinarum para el agente causal del “catarro contagioso” de los pollos. Con base estudios bacteriológicos y en los criterios del sistema de nomenclatura binomial, de manera independiente.
  • 8. RESEÑA HISTORICA  En 1934, Eliot y Lewis y Delaplane propusieron el nombre Haemophilus gallinarum para el agente causal de la coriza infecciosa. Varios estudios mostraron el requerimiento de los factores de crecimiento X (hemina) y V (NAD, dinucleótico de adenina nicotinamida) para el cultivo in vitro de H gallinarum. Sin embargo, McGaughey y Page señalaron la independencia del factor X de crecimiento en un número de aislamientos estudiados.
  • 9. RESEÑA HISTORICA  Basados en estos estudios, Biberstein y White propusieron la especie H. paragallinarum para los microorganismos causantes de coriza infecciosa, dependiente del factor V pero independiente del factor X de crecimiento. A partir de entonces, con excepción de un informe los nuevos aislamientos en brotes de coriza infecciosa se clasifican como H. paragallinarum.  Hoy se acepta que H. gallinarum nunca existió y que la confusión se debió a la descripción errónea de los aislamientos estudiados a causa de limitaciones en las técnicas de laboratorio empleadas
  • 10. ETIOLOGIA  La bacteria causante, Haemophhilus paragallinarum, es un bacilo Gram negativo, pleomorfo, inmóvil, catalasa negativo y microaerófilo, que requierede NAD (factor V) para el crecimiento.  La bacteria tiene tres serovariedades: A, B y C.  La gran mayoría de los brotes son causados por las serovariedades A y/o C.  Cuando se cultiva en agar sangre con una colonia de estafilococos que excreta el factor V, las colonias satélites adquieren el aspecto de gotas de rocio.
  • 12.
  • 13. PATOGENECIDAD  Los antígenos hemoaglutinantes, o hemoaglutininas, son las estructuras principalmente relacionadas con la antigenicidad, patogenicidad e inmunogenicidad de H. paragallinarum.  Se considera que la adherencia bacteriana a las células epiteliales es el primer paso en el proceso de infección de las superficies mucosas.  Las adhesinas son las estructuras bacterianas que median la adherencia a los receptores de las células del huésped. Esta adherencia se ha demostrado in vivo e in vitro de H. paragallinarum a células epiteliales traqueales de pollo.
  • 14. PATOGENECIDAD  Se ha demostrado que la hemocina producida por la bacteria puede ser importante en la colonización de los senos respiratorios de los pollos.  Se considera que H. paragallinarum es un agente patógeno primario en aves susceptibles.
  • 15. EPIDEMIOLOGÍA Y TRANSMISIÓN  El reservorio de la infección son las aves con una infección crónica o las portadoras sanas. Son sensibles los pollos de todas las edades, pero la sensibilidad aumenta con la edad.  P. I. de 1 a 3 días.  La enfermedad dura normalmente 2 semanas.  En campo, enfermedades concomitantes (p.e. micoplasmosis) la prolongan por varias semanas.  Aves infectadas: amenaza constante para las que no están.  Granjas con aves de diferentes edades, tienden a perpetuar la enfermedad.
  • 16.  La enfermedad se transmite HORIZONTALMENTE: Contacto directo (secreciones nasales y oculares), aerosoles (gotitas transportadas por el aire), agua contaminada, por comederos y bebederos sucios , manipulación incorrecta de animales infectados, partículas de polvo o aire contaminadas .  El hecho de que las aves que padecen la enfermedad queden como “portadoras sanas” en la instalación avícola, constituyen un riesgo inminente de contagio para los nuevos lotes de reeplazo.
  • 17. HALLAZGOS CLÍNICOS  En la forma más leve de la enfermedad (observada en pollas jóvenes de raza Leghorn o de carne), el único síntoma puede ser depresión, una secreción nasal serosa y, a veces, una tumefacción facial leve.  En la forma más grave (generalmente en ponedoras jóvenes y adultas de raza Leghorm o reproductoras pesadas) se produce una tumefacción grave de uno o ambos senos infraorbitarios, con edema de los tejidos vecinos que puede llegar a provocar el cierre de uno o ambos ojos.  En las aves adultas (especialmente los machos), el edema puede extenderse al espacio
  • 18.
  • 19.
  • 21.  Puede haber estertores, descarga nasal, lagrimeo (espuma en la conjuntiva ocular), secreción nasal serosa, tos; estornudos; dificultad respiratoria; los pollos sacuden la cabeza, plumas del ala manchadas,depresión, diarrea; todo de intensidad variable, según la extensión de la infección.  En las fases agudas de la enfermedad disminuye el consumo de agua y alimentos (anorexia).  La tumefacción desaparece en 10-14 días. Si se desarrolla una infección secundaria, la tumefacción puede durar meses.
  • 22.
  • 23.
  • 24.
  • 25.
  • 27.
  • 28. Coriza en un gallo de pelea y en una paloma.
  • 29. Grados de coriza  El ave de abajo es  Grado 2 sana, la de arriba presenta una leve enfermedad.
  • 32. Grado 4  El edema y la hinchazón son más notables, dificultad para abrir los ojos.
  • 34.
  • 35.  La producción de huevos puede retrasarse en gallinas jóvenes y reducirse gravemente entre un 10 y 40% la producción de huevos en gallinas adultas (generalmente en el pico de postura).  La enfermedad causa alta morbilidad y baja o nula mortalidad.  Los pollos de engorde presentan retraso en el crecimiento, perdida de peso y aumento en el número de aves que deben ser eliminadas; ocasionando altas pérdidas.
  • 36.
  • 37. LESIONES  CASOS AGUDOS. Las lesiones se presentan principalmente en los senos infraorbitarios: Exudado copioso, persistente, grisáceo y semilíquido. Cornetes y senos nasales congestionados con el exudado purulento. Más tarde y con la participación de otros gérmenes patógenos(E. coli. Mycoplasma gallisepticum y/o Mycoplasma sinoviae) el exudado puede consolidarse y adquirir un color amarillento (se cronifica la enfermedad).  También se puede encontrar otras lesiones como: conjuntivitis, traqueítis, bronquitis y aerosaculitis (inflamación de los sacos aéreos)..
  • 38. LESIONES  A nivel histológico, la respuesta de los órganos respiratorios consiste en la desintegración e hiperplasia de la mucosa y el epitelio glandular junto con edema con infiltración de heterófilos, macrófagos y mastocitos.
  • 39. DIAGNÓSTICO  Es diagnostico el aislamiento de un microorganismo catalasa negativo, cultivado en colonias a partir de pollos que provienen de granjas con historial de coriza de rápida difusión.  Inoculación en pollos sensibles del exudado nasal de pollos infectados: produce síntomas típicos.  Detección de anticuerpos: pruebas de Aglutinación, Precipitación en gel de agar, y H.I. (inhibición de la hemaglutinación), alrededor de 2-3 semanas después de la infección.  DIAGNOSTICO POR LABORATORIO.
  • 40.
  • 41. Aislamiento.  Aislamiento de H. paragallinarum a partir de los senos infraorbitarios.  Una vez sacrificada el ave se procede a cortar la región infraorbitaria con ayuda de pinzas estériles. Se debe tener en cuenta la esterilidad del medio para evitar la contaminación con otras bacterias, para ello se cauteriza la zona orbitaria antes de realizar el corte.
  • 42.
  • 43. Siembra  El hisopado de los senos infraorbitarios del ave es sembrado por agotamiento en una placa de agar sangre en completa esterilidad. Luego se procede a sembrar en línea vertical una cepa de Staphylococcus spp. (crecimiento en satélite), las colonias de H. paragallinarum crecerán alrededor del crecimiento de Staphylococcus spp.  También se puede tomar hisopos traqueales (mejor de la hendidura palatina).
  • 44.
  • 47. DIAGNÓSTICO  DIAGNÓSTICO CLÍNICO: Es un poco difícil.  DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL: Cólera aviar, micoplasmosis, laringotraqueítis, enfermedad de New Castle, bonquitis infecciosa, gripe aviar, síndrome de cabeza hinchada (S.C.H.) y deficiencia de vitamina A.
  • 48. CONTROL Y TRATAMIENTO  La prevención es la única forma de controlar la coriza in-fecciosa. Mantener separadas las aves de diferentes edades y sin aglomeración. Separar las aves afectadas o portadoras de la población sana. Comprar solamente pollos y gallinas de fuentes libres de la infección.  Si ocurriera infección, el único procedimiento que queda para eliminar la enfermedad es la despoblación completa de las instalaciones, seguida de una limpieza /desinfección a fondo. (COSTO ?)
  • 49. CONTROL Y TRATAMIENTO  Si las pollitas de reposición tienen que colocarse en una granja con antecedentes de coriza infecciosa, existen bacterinas disponibles que ayudan a prevenir y controlar la enfermedad.  VACUNACIÓN: Las bacterinas deben contener los tres serotipos A, B y C. Porque no hay protección cruzada. También se le incorporan serovariantes existentes en la población objetivo.  El plan de vacunación comprende dos o tres aplicaciones de la bacterina:
  • 50.  La primera a las 8 semanas de edad.  La segunda a las 12 semanas. Y se hay una tercera aplicación se realiza a las 17 semanas, antes de inicio de producción.  La aplicación se hace por vía subcutánea en el cuello, detrás de la cabeza; generalmente a dosis de 0,5 ml por ave.  Se aconseja no aplicar otra clase de vacuna al mismo tiempo  .
  • 51. CONTROL Y TRATAMIENTO  Tratamiento con antibióticos. La enfermedad no puede ser eliminada completamente. No existe un tratamiento específico, aunque el uso de sulfato de quinolonas, tetraciclinas, fosfomicina,sulfadimeto xina, sulfonamida-trimetoprim, eritromicina en el alimento o el agua, tetraciclina por vía subcutánea, pueden reducir los síntomas de la enfermedad, pero no pueden eliminarla completamente.  El tratamiento debe iniciarse en forma rápida en el agua de bebida, después se puede reforzar en el alimento.
  • 52. CONTROL Y TRATAMIENTO  En los brotes más graves, aunque el tratamiento puede producir una mejoría, la enfermedad puede reaparecer cuando se suspende la medicación.
  • 53. Algunos antibióticos y su dosificación.  FOSFOMICINA: Dosificación: en aves 40 mg/Kg. de peso vivo, por 3 -7 días en al agua de bebida o a criterio del M.V.  Producto comercial: FOSBAC-25% . Composición: Cada 100 g contienen 25 g de fosfomicina. Presentación: sobres de 500 g.  DOXICICLINA: Dosificación en aves : 15 - 20 mg/Kg de peso del ingrediente activo cada 24 horas por 3 a 5 días , a criterio del Médico Veterinario, en el agua de bebida.  Producto comercial: DOXIPHAR-25%. Composición  Cada 100 g de DOXIPHAR contiene: Doxiciclina Hiclato 25 grs..Presentación: sobres de 1 kg.
  • 54.  CIPROFLOXACINA: . Dosificación: AVES: La dosis mínima de Ciprofloxacina es de 10 mg/Kg de peso al día. El tratamiento debe repetirse por 3 a 5 días o a criterio del Médico Veterinario, administrada en el agua de bebida.  Producto comercial: CIPROPHAR- 10%. Composición: Cada 100 grs de CIPROPHAR contiene 10 g. de CIPROFLOXACINA Clorhidrato. . Presentación: Sobres por 20 grs., 100 grs. y 1 kilo.
  • 55.  AMOXICILINA (Betalactámico).Dosificación: AVES: Los estudios de farmacocinética demuestran que la dosis óptima es de 15–20 mg de Amoxicilina Trihidrato por Kg de peso. Durante 3-5 días o a criterio del M.V., en el agua de bebida.  Producto comercial: AMOXIPHAR- 50%. Composición: Cada 100 gramos contienen Amoxicilina Trihidrato 50 grs.  Presentación: Sobres de 100 grs.
  • 56.  ENROFLOXACINA. Dosificación: Aves: 10 mg por kilo de peso (es mejor utilizarla a dosis de 15- 20 mg por kilo de peso).durante 5 días o a criterio del M.V. en el agua de bebida.  Producto comercial: BAYTRIL-10%. Composición: Cada 100 c.c. contienen 10 g. de Enrofloxacina.  Presentación: Frasco por 1 litro.
  • 57.  OXITETRACICLINA inyectaable. Dosificación: En aves es de 50 mg. Por kilo de peso, vía subcutánea en la región posterior de la cabeza. Generalmente una sola aplicación.  Producto comercial: TERRAMICINA L.A. Composición: cada 100 c.c. contienen 20 g. de oxitetraciclina. Presentación: frasco por 250 c.c.
  • 58. También se puede utilizar droga en el alimento.  Por ejemplo, la CLORTETRACICLINA CHL. La dosis para aves es de 70 mg/ave/día. Generalmente el producto viene al 80%. Un kilo del producto contiene 800 grs. De Clortetraciclina Chl.